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#1 |
Senior Member
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Benzodiazepine e strane rilevazioni strumentali
Ho una questione da risolvere in laboratorio.
![]() C'è un campione X contenente un dosaggio elevato di Lorazepam (una benzodiazepina). Questo campione a concentrazione intera (1:1) fa segnare valori fra i 77 ng/mL e gli 85 ng/mL e quindi risulta negativo con reazione antigene-anticorpo. Gli standard utilizzati per la calibrazione sono proprio di Lorazepam e quindi ci dovrebbe essere piena corrispondenza (oltre che controlli con valori corretti). A questo punto lo si diluisce 1:2 con soluzione fisiologica e si ottiene 47 ng/mL. Se però lo si idrolizza seguendo la metodica (con β glucoronidasi) senza diluizione esce dalla curva (e quindi segna come superiore al limite). Se lo si diluisce 1:2 stessa situazione che si ripete anche a 1:4. Con diluizione di 1:10 segna un valore di circa 600 ng/mL. Escludendo l'effetto hook sull'intero (non tornerebbe il valore ottenuto con la diluizione 1:2) cosa potrebbe essere il problema? ![]() ![]()
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![]() Ultima modifica di F1R3BL4D3 : 01-08-2008 alle 17:47. |
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#2 |
Senior Member
Iscritto dal: May 2002
Città: Pavia.. a volte Milano o Como...talora Buccinasco! Firenze fino al 15/7
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- qualcosa (che c'è nel campione e non negli standard) inibisce il saggio con l'anticorpo.
(ma esistono anticorpi contro i farmaci? ![]() (ma si possono fare misure quantitative con sti anticorpi??) (ma c'è una curva di taratura?) (non sarà un ELISA vero? occhio che non è per niente affidabile...) (la sensibilità del metodo è sufficiente o sei sotto il range lineare? vedo che dà reazione negativa nel saggio con l'anticorpo....) - idrolizzado e leggedo l'idrolizzato magari si legge qualcosa di altra origine (sempre nel campione e non nello standard) e non un catabolita prodotto con la blucuronidasi. Non so, un catabolita prodotto dal paziente presente nel sangue e assente negli standard. ma fare una massa proprio non si può? ![]() sei sicurissimo di non aver sbagliato i calcoli, si? ![]() ![]()
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"Le masse sono abbagliate più facilmente da una grande bugia che da una piccola". (Adolf Hitler) "Se sei bello ti tirano le pietre, se sei brutto ti tirano le pietre. se sei al duomo ti tirano il duomo". (cit. un mio amico ![]() |
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#3 | |||||||||
Senior Member
Iscritto dal: Mar 2005
Città: Castiglione Olona
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la reazione è la seguente: ab+BENZ+BENZ-G6PDH-> ab-BENZ (inibito)+AB-BENZ-G6PDH (inibito)+BENZ-G6PDH (attivo) Glucose-6-Fosfato+ NAD+ --->(BENZ-G6PDH)--->6-fosfogluconolactone+ NADH+ H+ (assorbe a 340nm) ab: anticorpo BENZ: benzodiazepine BENZ-G6PDH: coniugato diazepam-glucosio-6-fosfato deidrogenasi Quote:
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![]() ![]() La curva va da 0 ng/mL a 1000 ng/mL. Il cut-off è 200 ng/mL. Quote:
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![]() ![]() Ah, un controllo messo ad idrolizzare insieme al campione X e diluito è venuto in maniera corretta. Quindi tralasciando altre cause, l'enzima d'idrolisi non ha causato problemi. Ovviamente tralasciando un ipotetica sostanza presente nel campione e non nel controllo.
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![]() Ultima modifica di F1R3BL4D3 : 01-08-2008 alle 18:22. |
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#4 |
Senior Member
Iscritto dal: Mar 2005
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Up!
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#5 |
Senior Member
Iscritto dal: May 2002
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risolto?
![]() per escludere l'inibizione potresti mischiare il campione che dà lettura bassa con un altro campione "verificato", tipo 50:50. se non legge la metà della concentrazione del campione verificato c'è l'inibizione.
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#6 | |
Senior Member
Iscritto dal: Oct 2004
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![]() @fire: non ho neanche capito quale sia il tuo problema ma posso dirti....ma vattene a mare!!! ![]()
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...si va dritti a casa senza più pensare che la guerra è bella anche se fa male e torneremo ancora a cantare e a farci fare l'amore...l'Amore...dalle infermiere!!! |
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#7 | |||
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#8 |
Senior Member
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Pure io ho dei problemi di rilevamento..
mi sballa tutti gli strumenti ![]() http://www.hwupgrade.it/forum/showpo...ostcount=32633 ![]()
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#9 | |
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#10 | |
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non immaginavo che gli ab fossero aspecifici (era la cosa più ovvia ma l'ho scartata perchè mi pareva improbabile) ma non sono monoclonali? ![]() cioè, fate diagnostica con dei policlonali? ![]() la cosa è alquanto strana per non dire inquietante... è chiaro che dovete fare (o far fare) un dot-blot (o uno slot-blot) con tutte le specie chimiche e vedere quale anticorpo reagisce con quale composto, sennò così e un pò "alla cieca". ma quasi quasi una cromatografia "home-made" sarebbe la cosa più semplice a questo punto. Vuoi che non esistano colonnine per le benzodiazepine?
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#11 | |
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![]() di più non so.
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#12 | ||||||
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![]() Comunque: oggi abbiamo visto che diluendo il campione intero e non idrolizzato sia 1/10 che 1/20 i risultati continuano a decrescere. Quindi sarebbe praticamente da scartare un effetto hook a questo punto. Gli altri campioni dei due pazienti sotto terapia, dopo idrolisi, hanno avuto effetto simile a quello del campione X. Sapendo che comunque con l'idrolisi sicuramente deve aumentare la risposta, ma non di così tanto, volevo proporre anche un test in bianco (acqua e B-glucoronidasi) per avere una conferma che non ci sia veramente niente d'altro oltre che una prova facendo solo scaldare il campione senza enzima. Stà questione è un pò un casino, calibrazione e controlli perfetti (e i controlli sono urine comunque a tutti gli effetti e non soluzioni "preparate"). Cross-reagenza controllata e rispetta le attese. L'unica è, come dicevi tu all'inizio, la possibilità che ci sia una qualche sostanza che impedisca il contatto ag-ab e che venga inattivata a 60°C (per 3 ore) o dall'enzima. Per questo volevo controllare. Il fatto è che la sostanza a questo punto non sarebbe su un campione ma su ben 4. Domani intanto parlo con la dottoressa e l'aggiorno sui risultati. Poi vedremo come procedere.
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#13 |
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se scrivi ancora "screAning" propongo il tuo bannaggio dalla sezione
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#14 | |
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![]() dovrebbero dirvelo, batch (il "lotto"), epitopo/i utilizzato/i per l'immunizzazione, dosi e tempi dell'immunizzazione (i richiami influenzano la specificità), animale, metodo e livello di purificazione, sensibilità. idem se è un monoclonale (altamente auspicabile) nei prodotti per la ricerca nel bugiardino mettono anche un'immagine di western dell'esperimento che conferma la sensibilità e la specificità. Se glielo chiedi ti dicono anche cosa aveva mangiato il veterinario ![]() (scherzi a parte, per chi lavora sui vegetali conta anche l'alimentazione dell'animale: mangiando vegetali possono sviluppare anticorpi contro proteine nella dieta e fregarti con le cross-reattività dopo che hai immunizzato). "a regazzì mica stiamo a pettinà 'e bbambole" (cit.) ![]()
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#15 | |
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una colonnina semplice semplice, fase solida per affinità o a scambio ionico e poi lettura allo spettro in continuo (avrànno un'assorbanza queste benzodiazepine no?). io raccoglievo le frazioni da 1 ml di eluito una a una, figurati... IMHO dovreste "farvi sentire" da chi vi ha venduto macchina e kit; non funziona come dovrebbe (IMHO)
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#16 | |||
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![]() ![]() C'è solo con la massa ![]() Quote:
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![]() Ultima modifica di F1R3BL4D3 : 05-08-2008 alle 16:34. |
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#17 |
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Hai PVT con un'immagine da quasi 1MB.
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![]() Ultima modifica di F1R3BL4D3 : 05-08-2008 alle 16:39. |
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#18 |
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"di che origine" è l'anticorpo? non vedo niente... sarà sull'altra facciata del bugiardino?
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#19 | |
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E' scritto verso la metà della prima colonna prima pagina: origine: pecora
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